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叶 丽 虹 !等

!

不 同 转 移 能 力 乳 腺 癌 细 胞 株 的 差 异 表 达 蛋 白 研 究

通过建立并应用

"#$%

鼠 肿 瘤 转 移 模 型 !从 人

乳腺癌细胞系

&’()*

中筛选并建立了具有高转移

潜能的转移亚克 隆

+&)&’()*

"

,#

$

获 得 国 家 发 明 专

利!专利号

-+ ./0/0.12345

%&

在此基础上!应用含

10 /16

个 基 因 的 基 因 芯 片 ! 对

+&)&’()*

&’()*

细胞的基因表达谱进行了比较! 获得了

2*

个差异表达的基因!其中

/5

个文献 报 道 与 肿 瘤 有

关 !

6

个 与 乳 腺 癌 转 移 有 关 !

2

个 可 能 参 与 肿 瘤 浸

润和转移过程

"

1#

&

然而!它们在蛋白质表达水平上

的差异尚不清楚& 本研究采用蛋白 质 组 学 技 术 和
免疫印迹等方法检测了上述不同转 移 能 力 的 乳 腺
癌细胞株中蛋白质表达水平的差异! 并 进 行 其 功
能研究!旨在筛选乳腺癌转移相关蛋白!从而进 一
步阐明乳腺癌转移的分子机理&

!

材料与方法

!"!

材料

人乳腺癌细胞系

&’()*

为本实验室储备!

+&)

&’()*

细胞为本实验室建立

"

0#

!

均采用

78&$)0239

$

含 有

0.:

胎 牛 血 清 !

0.. !; < =>

硫 酸 链 霉 素 和

0.. ? < =>

青霉素%培养液!在

/*@

5: ’A

1

条件下

’A

1

培 养 箱 中 培 养 & 兔 抗 人

B=1/

多 克 隆 抗 体 $

0

(

/..

稀释%购 于

CD%4D$A4

公 司 !兔 抗 人

&+’E

多 克

隆 抗 体 $

0F0. ...

稀 释 % 购 于

"G;=H

公 司 ! 鼠 抗 人

存 活 蛋 白 单 克 隆 抗 体 $

0F3..

稀 释 %’ 兔 抗 人

DI>)1

多克隆抗体$

0F1..

稀释%’兔抗人

J1*

多克隆抗体

$

0F0 999

稀释%和鼠抗人

")K?L?>GB

单 克 隆 抗 体 $

0F

599

稀释%均购于

MNO&HPQNPR

公司& 克隆有存活蛋

白 $

R?PSGSGB

%

基因的

JI%MT/)"?P

质粒为本 实 验 室

制备

"

/#

!

JI%MT/

UV(8

质粒为本实验室储备&

!"#

蛋白样品制备

分别取对数生 长 期 的

+&)&’()*

&’()*

胞!用预冷的

8D"

/

次& 加入适量

9415:

胰蛋白

酶溶 液 消 化 细 胞!

3 999 P < =GB

!

3@

离 心

,9 =GB

!

集细胞& 加入适量细胞裂解液$

3: ’WT8"

!

X =O> < +

尿素!

1: 8YHP=H>ZKN /),9

%

并加入蛋白酶抑制剂混

合 物 !

3@

作 用

/9 =GB

&

然 后

,/ 999 P < =GB

!

3@

,5 =GB

!

取上清& 测定蛋白浓度!

[*9@

保存&

!"$

第一向固相

%&

梯度等电聚焦电泳

JW/)09

$8V

胶 条 对 蛋 白 样 品 进 行 一 维

等电聚焦电泳& 分别取

+&)&’()*

&’()*

细胞

裂解液! 与重泡胀液 $

1: ’WT8"

!

X =O> < +

尿素!

945: $8V

缓冲液!

94991:

溴酚蓝%混合后加入持胶

槽!然后将胶条放于持胶槽中!将样品溶液从正 极

到负极均匀铺展!在加样后的胶条上覆盖一层

$8V

覆盖液& 然后按以下程序进行(重泡胀时

9\

!

1 Y

)

然后

/9 \

!

09 Y

)

初始化时

$U(599\

!

0 Y

!

然后

0 999

\

!

0 Y

)

达到稳定态后

$U(X999\

!

* Y

&

!"’

第二向

()(*+,-.

等电聚焦电泳结束后! 胶条置于平衡液

T

$

59

==O> < + CPGR)W’>

!

JWX4X

!

2 =O> < +

尿 素 !

/9:

甘 油 !

1: "%"

!

19 ==O> < + %CC

!

94991:

溴 酚 蓝 % 中 ! 摇 动

孵育

05=GB

&

然后置平衡液

D

$

59 ==O> < + CPGR)W’>

!

JWX4X

!

2 =O> < +

尿素!

/9:

甘油!

1: "%"

!

099 ==O> < +

碘乙酰胺!

94991:

溴酚蓝%中!摇动平衡

05 =GB

&

出胶条! 用二维电泳缓冲液 $

15 ==O> < + CPGR

!

061

==O> < +

甘 氨 酸!

940: "%"

%

洗 去 多 余 平 衡 液 !转 移

0145:

"%")8TVU

上进行二维电泳& 先

/9 =T

恒 流 电 泳

/9 =GB

!

29 =T

恒 流 电 泳 直 到 指 示 剂

抵胶底时结束&

940:

考马斯亮蓝

7)159

染液染色

1]/ Y

!

换脱色液!摇动脱色直至背景干净&

!"/

二维胶分析及质谱分析

对比分析两块

"%")8TVU

胶!从胶中切下明显

差 异 表 达 的 蛋 白 质 点 !经 脱 水 ’还 原 ’烷 基 化 和 脱
色处理后!采用胰酶原位消化胶块!提取消化 得 到
的 肽 段 ! 利 用

U"$)^_T%)CA(

质 谱 仪 分 析 并 在

&"%D

蛋 白 质 数 据 库 中 比 对 质 谱 分 析 得 到 的 肽 序

列标签以确定蛋白&

!"0

免疫印迹

参照文献报道的方法进行免疫印迹

"

/#

&

样品进

"%")8TVU

电 泳 后 !电 转 移 至

8\%(

膜 !然 后 封

闭’一抗’二抗反应!化学发光法显色!压片显影&

!"1

基因转染

采 用 脂 质 体 介 导 转 染 法 在

2

孔 板 中 将

/ !;

JI%MT/)"?P

JI%MT/

质 粒 分 别 与

940 !; UV(8

质粒共转染

&’()*

细胞&

01 Y

后倒置荧光显微镜

下观察细胞中绿色荧光蛋白的表 达 ! 以 观 察 转 染
效率&

*1 Y

后进行免疫印迹!检测存活蛋白的表达

水平!方法同上&

!"2

!伤口愈合"实验

将 转 染

JI%MT/)"?P

JI%MT/

&’()*

胞及对照组

&’()*

细胞接入

2

孔板! 细胞生长覆

盖率达到

69:

后! 用移液器枪头沿培养板底部呈

*

一 +字 形 划 痕 单 层 培 养 细 胞 !继 续 培 养 & 于

9 Y

13 Y

3X Y

*1 Y

时 在 倒 置 显 微 镜 下 测 量 细 胞 向

致伤区迁移的相对距离并照相& 根 据 原 始 细 胞 致
伤区距离计算出细胞实际迁移距 离 ! 每 组 设

/

孔!测量后取均数&

!"#

C

M

Y

K