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]。而获得优良种子的主要因素包括选用合适的种子培养基及良好的种子培养条件。对L-
苏氨酸生产菌WS4006-7E-NUT-21的种子培养基及部分培养条件进行了研
究,旨在为L-苏氨酸的工业化生产提供理论依据。

 

  1材料与方法

 

  1.1材料

 

  1.1.1菌株L-苏氨酸产生菌WS4006-7E-NUT-21为从江苏畜牧
兽医职业技术学院生物技术实验室保存的菌株WS4006中分离诱变选育得到的菌株,
初步鉴定为嗜麦芽寡养单胞菌(Stenotrophomonas

 maltophil

ia)。

 

  1.1.2培养基[4]基础种子培养基:葡萄糖40

 g/L,硫酸铵4 g/L,玉

米浆30

 g/L,酵母膏5 g/L,K2HP O 4 1 g/L,KH2P04 1 g/L,

MgS04・7H20

 0.25 g/L,Fe2S O 4・7H2 O 0.01 g/L,M

nS

O 4・H2O 0.01 g/L,pH 7.0,115 

℃灭菌15 min。发酵培养

基:蔗糖

 100 g/L,硫酸铵 20 g/L,K2HP O 4 0.5 g/L,KH2P

O 4 0.5 g/L,MgS O 4・7H2O 0.25 g/L,玉米浆 20 g/L,F
e2S

O 4・7H2O 0.01 g/L, 

  1.2方法

 

  1.2.1种子培养及苏氨酸发酵

①菌体斜面活化:取保藏培养基上保藏的菌种,挑

少许菌落接种到制备好的活化培养基斜面上,30

 

℃培养48 h,使菌株达到最佳生长

状态。

②种子培养:在装有25 mL种子培养基的250 mL摇瓶中,接种一环新鲜的活

化种子,8层纱布封口,于全温振荡器上30

 

℃、180 r/min振荡培养14 h。③

发酵培养:在装有25

 mL发酵培养基的250 mL摇瓶中,以10%的接种量接种种子

培养液,8层纱布封口,置全温振荡器上30

 

℃、180 r/min振荡培养72 h。④

用pH

 6.4~8.0的精密pH试纸测定pH值。

⑤L-苏氨酸产量的测定采用纸层析

法[5]。

 

  1.2.2正交试验优化种子培养基成分种子培养基的组成不同,会导致培养基中的
微量元素和其他营养成分含量发生变化,对菌体生长和产物形成的影响很大。选取种子培养
基的主要成分葡萄糖(A)、玉米浆(B)、硫酸铵(C)、酵母膏(D)4个因素,每个因
素选取3个浓度水平,进行L9(34)正交试验,优化种子培养基,每个试验组两次重
复,各因素及水平见表1。

 

  1.2.3单因素试验优化培养条件设置单因素试验,分别考察种子培养基装液量、种
子接种量、初始pH值和种龄对菌株产L-苏氨酸产量的影响。

①种子培养基装液量:分别

取一环新鲜的活化菌种至装有15、20、25、30、35

 mL种子培养基的250 mL三

角瓶中,于30

 

℃、180 r/min振荡培养16 h后,转入发酵培养基中摇瓶发酵7

 h后测定L-苏氨酸的产量;

②种子接种量:将活化菌种接种到试验①所得的最优种子

培养基装液量下培养16

 h后,分别以6%、8%、10%、12%、14%的接种量接入发

酵培养基中发酵72

 h后测定L-苏氨酸的产量;

③种子液初始pH值:按照①、②优化后

的培养条件,将活化的菌种接种到pH值分别为6.4、6.7、7.0、7.2、7.5、7.
7的种子培养基中培养16

 h后,接入发酵培养基中培养72 h后测定L-苏氨酸的产量。

④种龄:取一环新鲜的活化菌种,接种于装有50 mL种子培养基的250 mL三角瓶中,
振荡培养,每隔2

 h取样0.5 mL,用无菌水稀释10倍后,用722型紫外分光光度

计测定吸光度(OD508

nm),以时间为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制种子生长曲线;

取一环新鲜的活化菌种,按照

①~③所得的条件对活化的菌种进行培养,6~22 h期间

每隔2

 h取种子液接种到发酵培养基中,30 

℃、180 r/min振荡培养72 h后