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宁夏医科大学学报

Journal of Ningxia Medical University

34 卷 2 期

 

2012 年 2 月

1.

3 

流动相

A 液的配制 0.018mol・ L

-1

磷酸二氢钠 +

0畅

001

mol・ L

-1

EDTA, 用 20% 硝 酸 调 至 pH =2.5, 经

0畅

45μ

m 双层水系滤膜过滤。

1.

4 

流动相

B 液的配制 0.018 mol・ L

-1

磷酸二氢钠,用

20%

硝酸调至

pH =2.5,经 0.45μm 双层水系滤膜过滤。

1.

5 

高效液相色谱分析条件 流动相

A 液为(0.018mol・

-1

磷酸二氢钠 +0.001

mol・ L

-1

EDTA):甲醇 =60∶50(V/

V,pH =2.5),流速为 1.0mL・ min

-1

检测波长为 270

nm,

柱温为 21℃,进样量为 20μ

L,梯度淋洗,0 ~10min 时,流动

A 液∶甲醇体积比为60∶50,到 15 min 时变为流动相 B

液,持续 10

min 后,再恢复流动相 A 液:甲醇体积比为 60

50。

1.

6 

戴安

ASE200 快速溶剂萃取仪萃分析条件 系统压

力:1000

psi;加热炉温度:105℃;炉加热时间:10min;静态萃

取时间:5

min;新溶剂量:50mL,60%冲洗;吹扫时间:30s;静

态萃取次数:2 次;溶剂:15%硫酸锌溶液。

1.

7 

标准曲线的制作 用流动相

A 液稀释制备含四环素、

氯霉素的标准溶液,四环素浓度在 0.10 ~8.00μ

g・ mL

-1

间,氯霉素浓度在 0.2 ~12μ

g・ mL

-1

进样量 20μ

L,测量保

留时间及峰面积,每种浓度重复 6 次,用峰面积对浓度求回
归方程式,氯霉素

Y =43.6425x +0.1124,r =0.9998, 四环

Y =42.8345x +1.1231,r =0.9998。

1.

8 

样品前处理 准称取样品 1.0

g,加 10.0g 硅藻土,研

磨成沙状,放入事先在底部装有 10.0

g 的氟罗里硅土萃取

池中,以下按 1.6 的方法操作进行萃取,后将萃取液倒入
K -D浓缩器浓缩至约 1mL,移入 2mL 定量瓶中,用 15%硫
酸锌溶液定容至 2

mL,经 0.45μm 双层水系滤膜过滤,待分

析测定。

1.

9 

样品的测定 把处理好的样液放入

G1313A ALS 自

动进样器中进行

HPLC 分析,记录 2 种抗生素的峰面积,根

据 2 种抗生素的保留时间定性,峰面积和标准曲线定量。

2 

结果

2.

1 

波长的选择 在仪器上根据 2 种抗生素的紫外吸收

光谱图可见,四环素在 270、355

nm 处各有一个吸收峰,氯霉

素在 278

nm 处有一个吸收峰,分别在波长 270、278 和 355

nm 处以 2 种抗生素的混合标准液进行测定。 结果表明,在
波长 270

nm 处,2 种抗生素色谱峰分离较好且灵敏度高,故

选择测定波长为 270

nm。

2.

2 

流动相的选择

2.

2.

1 

流动相比例的选择 为了有利于色谱峰的分离,选

用 0.018

mol・ L

-1

磷酸二氢钠溶液与甲醇的混合液为流动

相。 分别进行

磷酸二氢钠

甲醇

=80∶

40、70∶

45、60∶

50、50∶

55

的试验。 由仪器显示色谱图可见,随着流动相中甲醇含量
的增加,2 种抗生素测定的灵敏度升高,保留时间减少。 但
色谱峰分离变差。 考虑到分离度和保留时间,本方法选用

磷酸二氢钠

甲醇

,60∶

50

为流动相。

2.

2.

2 

流动相的选择优化 流动相中加入

EDTA 是为了

提高方法的精密度,使分离效果更好,因为四环素类抗生素
分子中含有酚羟基和烯醇基,易与二价金属结合,造成重现

性差,流动相中加入适量

EDTA 可以改善这种现象,经比较

实验,加入 0.001

mol・ L

-1

EDTA 对方法的精密度起到了

稳定的作用。

2.

3  

硫酸锌浓度的选择 用样品分别做浓度为 5.0%、

10畅

0%、15%

和 20%硫酸锌溶液的萃取试验,观察蛋白质沉

淀率及对测定结果的影响,随着硫酸锌浓度的增大,样品中
的蛋白质沉淀更加完全,有利于萃取液的过滤,结果表明:

15%,20%

时蛋白质沉淀最完全,峰面积一致,故选 15%。

2.

4 

样品处理萃取液的选择 用硫酸锌溶液作为萃取液

是因为 2 种抗生素都能够溶解于水,硫酸锌溶液可沉淀营
养面霜中的蛋白质,起到萃取、净化的作用,无需再进行液
样微净化,可直接进样测定。

2.

5 

静态萃取次数的选择 选 1、2、3 次,萃取 1 次,萃取

率低,峰面积低,萃取 2、3 次峰面积基本一致,故选萃取

次。

2.

6 

静态萃取时间的选择 选 1、2、5、6、8

min、观察峰面

积及萃取率的变化,结果表明 5、6、8

min,峰面积基本一致,

1、2、3

min、峰面积偏低,故选 5min。

2.

7 

方法的回收率和精密度 以空白面霜样品为本底,分

别加入不同量的四环素、氯霉素,每个样品平行测定 6 次,
见表 1。

表 1 抗生素的回收率和标准偏差(

n =6)

抗生素

加入量 /

μ

g・ mL

-1

测得值/

μ

g・ mL

-1

回收率 /

RSD/

四环素

 

98

98

15

 

05

101

45

 

06

100

35

氯霉素

 

01

100

04

 

06

101

96

10

10

 

04

104

65

2.

8 

方法的线性范围和检出限 四环素浓度在 0.10 ~

8畅

00μ

g・ mL

-1

之间,氯霉素浓度在 0.2 ~12μ

g・ mL

-1

有良好的线性关系,相关系数

r 值为 0.9998。 四环素最低

检出限为 0.27

mg・ kg

-1

氯霉素最低检出限为 0.15

mg・

kg

-1

S/N >3 计算四环素定量下限为 0.38mg・ kg

-1

氯霉素定量下限为 0.19

mg・ kg

-1

样品以 1.0

g 计)。

2.

9 

实际样品的测定 对市售 10 种品牌 65 个营养面霜

样品进行检测,样品中检出 34 份含四环素,含量为 1.0 ~

1346

mg・ kg

-1

,1

份含氯霉素和四环素, 氯霉素含量为 126

mg・ kg

-1

四环素含量为 327

mg・ kg

-1

3 

小结

  

目前,市售的化妆品中有加抗生素的现象发生,尤其是

加四环素和氯霉素类药物居多,对人体的健康构成潜在的
危害

[5]

长期接触四环素、氯霉素会在身体内富集,对胃、

肠、肝脏及牙齿等均有副作用,还会造成过敏反应,二度感
染,致畸胎等,而氯霉素有更严重的副作用,它能抑制人体
骨髓造血功能而引起再生障碍性贫血和粒状白细胞缺乏症
等疾病。 因此,对化妆品中抗生素的检测刻不容缓,本方法
各项指标均符合方法学的要求,且快速简便,尤其适合抽检